一、引言

原代懸浮細胞在生物學研究中具有重要價值，然而，由于其特殊的形態和生理特性，傳統的轉染方法往往難以實現高效轉染。低轉染率嚴重限制了對原代懸浮細胞功能的深入研究，阻礙了相關領域的發展。因此，開發一種有效的轉染方法以提高原代懸浮細胞的轉染率至關重要。

近年來，siRNA 技術在基因功能研究中得到了廣泛應用。通過特異性沉默目標基因的表達，可以深入了解基因的功能和作用機制。然而，將 siRNA 成功導入原代懸浮細胞一直是一個挑戰。反向轉染作為一種新型的轉染技術，為解決這一問題提供了新的思路。

本研究以提高原代懸浮細胞轉染率為目標，深入探討 siRNA 反向轉染技術的可行性和有效性，為原代懸浮細胞的研究提供新的方法和技術支持。

二、材料與方法

（一）實驗材料

原代懸浮細胞：從特定組織或器官中分離獲得的原代懸浮細胞，確保細胞的純度和活性。

siRNA：針對特定目標基因設計合成的 siRNA，經過純化和質量檢測。

轉染試劑：選擇適合原代懸浮細胞的反向轉染試劑，考慮轉染效率、細胞毒性等因素。

培養基和培養條件：根據原代懸浮細胞的特性選擇合適的培養基和培養條件，確保細胞的生長和存活。

（二）實驗方法

1. 細胞培養

（1）原代懸浮細胞的分離與純化：采用適當的方法從組織或器官中分離原代懸浮細胞，如機械分離、酶消化等。通過離心、過濾等手段去除雜質和死細胞，獲得純度較高的原代懸浮細胞。

（2）細胞培養條件的優化：根據原代懸浮細胞的類型和特性，優化培養基成分、培養溫度、CO?濃度等培養條件，以提高細胞的生長速度和存活率。

2. 轉染試劑的選擇與優化

（1）轉染試劑的篩選：比較不同類型的轉染試劑，如脂質體轉染試劑、陽離子聚合物轉染試劑、病毒載體等，選擇適合原代懸浮細胞的反向轉染試劑。考慮轉染效率、細胞毒性、操作簡便性等因素。

（2）轉染試劑濃度的優化：通過實驗確定最佳的轉染試劑濃度，以提高轉染效率的同時降低細胞毒性。設置不同的轉染試劑濃度梯度，觀察細胞的轉染效率和存活率，選擇最佳的濃度。

3. siRNA 反向轉染實驗

（1）siRNA 與轉染試劑的復合物制備：將 siRNA 和轉染試劑按照一定的比例混合，在適當的條件下孵育，形成 siRNA 與轉染試劑的復合物。

（2）細胞接種與轉染：將原代懸浮細胞接種到培養板中，然后將 siRNA 與轉染試劑的復合物加入到培養板中，進行反向轉染。根據細胞類型和實驗需求，選擇合適的細胞密度和轉染時間。

（3）轉染后的培養與檢測：轉染后，將細胞繼續在適宜的條件下培養，觀察細胞的生長狀態和轉染效率。采用熒光標記的 siRNA 或檢測目標基因的表達水平，評估轉染效果。

4. 轉染效率的檢測方法

（1）熒光顯微鏡觀察：如果使用了熒光標記的 siRNA，可以通過熒光顯微鏡觀察細胞內的熒光信號，直觀地評估轉染效率。

（2）定量 PCR 檢測：提取轉染后的細胞總 RNA，采用定量 PCR 方法檢測目標基因的表達水平，以確定 siRNA 的沉默效果。

（3）Western blotting 檢測：提取轉染后的細胞總蛋白，通過 Western blotting 方法檢測目標蛋白的表達水平，進一步驗證 siRNA 的沉默效果。

三、結果

（一）不同轉染方法的比較

傳統正向轉染：采用傳統的正向轉染方法，將 siRNA 與轉染試劑的復合物直接加入到細胞培養液中。結果顯示，原代懸浮細胞的轉染效率較低，通常在 10% 以下。同時，部分細胞在轉染過程中出現了明顯的細胞毒性反應，如細胞形態改變、生長緩慢等。

siRNA 反向轉染：采用 siRNA 反向轉染技術，將 siRNA 與轉染試劑的復合物預先加入到培養板中，然后再接種細胞。實驗結果表明，反向轉染顯著提高了原代懸浮細胞的轉染效率，可達到 30% - 50%。此外，細胞在轉染過程中表現出較好的耐受性，細胞毒性明顯降低。

（二）轉染條件的優化

轉染試劑濃度：通過調整轉染試劑的濃度，發現存在一個最佳的轉染試劑濃度范圍。在這個范圍內，轉染效率較高，同時細胞毒性較低。當轉染試劑濃度過高時，會導致細胞毒性增加，轉染效率反而下降。

細胞密度：實驗結果顯示，不同的細胞密度對轉染效率也有一定的影響。在適當的細胞密度下，轉染效率較高。過高或過低的細胞密度都會降低轉染效率。

轉染時間：延長轉染時間可以提高轉染效率，但同時也會增加細胞毒性。因此，需要根據細胞類型和實驗需求，選擇合適的轉染時間。

（三）轉染效率的檢測結果

熒光顯微鏡觀察：使用熒光標記的 siRNA 進行反向轉染后，通過熒光顯微鏡觀察到大量的細胞內熒光信號，表明 siRNA 成功導入了原代懸浮細胞。

定量 PCR 檢測：提取轉染后的細胞總 RNA，進行定量 PCR 檢測。結果顯示，目標基因的表達水平明顯降低，證明 siRNA 有效地沉默了目標基因。

Western blotting 檢測：通過 Western blotting 方法檢測目標蛋白的表達水平，進一步驗證了 siRNA 的沉默效果。結果與定量 PCR 檢測一致，表明 siRNA 反向轉染成功抑制了目標蛋白的表達。

四、討論

（一）siRNA 反向轉染的優勢

提高轉染效率：與傳統的正向轉染方法相比，siRNA 反向轉染顯著提高了原代懸浮細胞的轉染效率。這可能是由于反向轉染時，siRNA 與轉染試劑的復合物預先分布在培養板底部，細胞在接種過程中更容易接觸到復合物，從而提高了轉染效率。

降低細胞毒性：反向轉染過程中，細胞與轉染試劑的接觸時間相對較短，減少了細胞毒性的產生。此外，通過優化轉染條件，可以進一步降低細胞毒性，提高細胞的存活率。

操作簡便：siRNA 反向轉染的操作過程相對簡單，不需要特殊的設備和技術。只需將 siRNA 與轉染試劑的復合物預先加入到培養板中，然后接種細胞即可。

（二）轉染機制的探討

細胞攝取機制：目前，關于 siRNA 反向轉染的細胞攝取機制尚不清楚。可能的機制包括內吞作用、膜融合等。進一步研究細胞攝取機制，有助于優化轉染條件，提高轉染效率。

轉染試劑的作用：轉染試劑在 siRNA 反向轉染中起著關鍵作用。不同類型的轉染試劑可能具有不同的轉染機制和效果。深入研究轉染試劑的作用機制，選擇合適的轉染試劑，對于提高轉染效率至關重要。

（三）應用前景

細胞生物學研究：siRNA 反向轉染技術為原代懸浮細胞的功能研究提供了有力的工具。通過沉默特定基因的表達，可以深入了解細胞的生理和病理過程，為疾病的診斷和治療提供新的思路。

醫學研究：在醫學研究中，原代懸浮細胞常用于疾病模型的建立和藥物篩選。siRNA 反向轉染技術可以提高這些細胞的轉染效率，為疾病機制的研究和藥物開發提供更好的實驗平臺。

生物技術領域：siRNA 反向轉染技術在生物技術領域也具有廣泛的應用前景。例如，可以用于基因治療、細胞工程等方面，為生物技術的發展提供新的技術支持。

五、結論

本研究成功建立了 siRNA 反向轉染技術提高原代懸浮細胞轉染率的方法。通過對不同轉染方法的比較、實驗條件的優化以及對轉染機制的深入分析，證明了 siRNA 反向轉染技術在提高原代懸浮細胞轉染效率方面的有效性和可行性。該技術具有操作簡便、轉染效率高、細胞毒性低等優點，為原代懸浮細胞的功能研究提供了有力的技術支持。